数据收集与预处理
Bulk RNA-seq数据整合:整合GSE7307(7例BPH,13例正常)和GSE119195(5例BPH,3例正常)数据集,去除批次效应后获得12例BPH和16例对照的统一表达谱。
OS相关基因集构建:整合文献来源的807个OS基因、MSigDB的HALLMARK_REACTIVE_OXYGEN_SPECIES_PATHWAY和GOBP_RESPONSE_TO_OXIDATIVE_STRESS等五个基因集,去重后获得1,060个独特的OS相关基因。
跨物种验证数据集:提供外部验证支持,评估标志物的生物学稳健性 | 整合两个啮齿类BPH模型数据集(GSE218403和GSE217800),经同源基因映射和批次校正后获得6例BPH和6例正常样本作为外部测试。
Bulk转录组分析
差异表达基因(DEG)分析:使用Limma包鉴定出323个上调和176个下调的DEGs(\|logFC\|>1,p<0.05)
加权基因共表达网络分析(WGCNA):软阈值β=8时构建25个模块,grey60模块与BPH相关性最强;与DEGs和OS基因取交集获得26个OS-DEGs
功能富集分析(GO/KEGG):GO分析显示富集于肽酶活性调节、氧化应激反应、血小板α颗粒、含铁离子结合等;KEGG分析突出HIF-1信号通路和铁死亡等OS相关通路。
蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)网络: STRING数据库构建的PPI网络显示这些基因间存在高度互联。
机器学习筛选枢纽基因
LASSO回归:10折交叉验证(重复5次)选择最优lambda,识别关键基因;
随机森林(RF): 重复10折交叉验证(5次重复)评估变量重要性,识别前15个候选基因;
SVM-RFE:5折交叉验证整合到递归消除过程,选择平均交叉验证准确率最高的特征集,识别4个关键基因;
Boruta算法:1000次迭代计算Z分数,识别11个显著变量。
交叉验证与性能评估:避免小样本量(12 vs 16)导致的信息泄露,获得可靠的预测性能估计 ,采用嵌套重复分层交叉验证框架,最终AUC反映留出测试而非样本内性能;ACOX2、CTSB、SERPINF1的AUC分别为0.880(0.753-1.000)、0.828(0.663-0.993)、0.854(0.711-0.997)。
枢纽基因确定:整合多种算法结果,四种算法交集确定三个上调枢纽基因:ACOX2、CTSB、SERPINF1。
临床转化模型构建
列线图构建:基于ACOX2、CTSB、SERPINF1构建列线图,校准曲线显示优秀校准度,ROC分析AUC=0.922;
决策曲线分析(DCA):使用caret和ggDCA包进行DCA分析;
共识聚类分子分型识别两个亚型:C1(非免疫浸润型)和C2(免疫浸润型);C2中ACOX2、CTSB、SERPINF1一致上调,富集免疫相关过程。
免疫微环境分析
单样本GSEA(ssGSEA):C2型显示更高的免疫细胞浸润和免疫功能评分,支持免疫浸润型与非免疫浸润型的分类;
免疫相关差异分析:使用reshape2和ggpubr包可视化为箱线图。
药物预测与分子对接
DSigDB药物签名匹配:通过Enrichr网站上传ACOX2、CTSB、SERPINF1,从DSigDB获得165个可能的敏感药物;
分子对接:槲皮素与CTSB结合能-7.9 kcal/mol,与SERPINF1结合能-7.3 kcal/mol;环孢素与两者结合能分别为-5.6和-5.9 kcal/mol。
单细胞RNA测序分析
数据质控与预处理:从GSE172357(13例BPH,6例正常)保留124,616个高质量细胞;过滤标准:250-5000个检测基因、<10%线粒体基因、<1%血红蛋白基因;使用DoubletFinder去除双细胞;
降维聚类与细胞注释:SCTransform归一化,PCA降维(前40个PC),分辨率0.7聚类获得23个簇,注释为9种主要细胞类型:成纤维细胞、平滑肌细胞、内皮细胞、管腔上皮细胞、基底细胞、T细胞、巨噬细胞、肥大细胞、神经内分泌细胞;
OS评分与稳健性评估:使用AUCell、UCell、AddModuleScore和ssGSEA四种算法,基于三个OS基因集评分;BPH中OS水平普遍升高,成纤维细胞和巨噬细胞中最高;样本水平评分方法间一致性ρ=0.25-0.83,GO:0006979一致性最高(ρ=0.51-0.83);
枢纽基因单细胞表达验证:ACOX2、CTSB、SERPINF1在多种细胞类型中广泛表达。
Fig 4 在单细胞水平验证BPH中枢纽基因及成纤维细胞异质性
成纤维细胞异质性深度分析
伪时间轨迹分析(Monocle 2):重建成纤维细胞从静息到激活状态的分化轨迹,揭示BPH和正常组织共享的连续分化过程;BPH成纤维细胞在整个轨迹中OS评分持续升高;
成纤维细胞差异表达分析: edgeR伪bulk DE检验(BH-FDR校正,q<0.05)鉴定1,144个上调和471个下调基因;
成纤维细胞功能富集:上调基因富集于脂质与动脉粥样硬化、Toll样受体信号通路;ACOX2被确定为成纤维细胞相关基因,沿伪时间逐渐升高;
细胞通讯分析(CellChat):ACOX2⁺成纤维细胞在BPH微环境中具有最高的推断通讯强度,处于信号网络中心;富集血管生成、ECM重塑/纤维化、免疫调节相关通路;TNFSF12-TNFRSF12A轴被优先为候选相互作用轴;
ACOX2⁺成纤维细胞GSEA:富集过氧化物酶体代谢、PPAR信号、脂肪酸氧化、胆汁酸合成等代谢通路;
成纤维细胞亚群再聚类:识别9个成纤维细胞亚群,包括ACOX2⁺成纤维细胞;BPH中ACOX2⁺成纤维细胞扩增(29% vs 10%),Fib C5簇减少;伪时间分析显示早期成纤维细胞(Fib C1、C2、C7)逐步分化为激活的ACOX2⁺成纤维细胞;
动态表达分析:鉴定BPH进展中关键的其他基因。
独立数据集验证
使用第二个独立rGBM单细胞数据集(Abdelfattah等),相同方法提取肿瘤星形胶质细胞和小胶质细胞,DotPlot分析
SAT1、ZFP36、TLR4在两个数据集的星形胶质细胞中均上调,RBMS1表达不一致;FTH1在两个数据集小胶质细胞中表达相反;排除RBMS1和FTH1,保留SAT1、ZFP36、TLR4进行后续分析。
Fig 6 ACOX2+成纤维亚群的拟时序轨迹,以及空间转录组验证
Fig 7 ACOX2 在氧化应激条件下调节前列腺间质细胞的增殖和存活,且在良性前列腺增生组织中其表达水平升高
空间转录组学分析
空间数据预处理与整合:GSE278936数据经质控、SCTransform归一化,Harmony整合;
空间OS评分:AddModuleScore和GSVA计算OS评分,SpatialFeaturePlot可视化;
spacexr反卷积(RCTD方法):整合ST和scRNA-seq表达谱,识别细胞类型的空间分布和细胞类型特异性差异表达模式;
BayesSpace独立验证: 独立验证反卷积结果,评估空间域与细胞类型的对应关系,q=7推断空间表达域;通过列联表和加权簇纯度(0.685)评估与RCTD的一致性;
组织学注释:基于H&E图像注释腺体丰富的上皮区域、基质/平滑肌丰富区域、血管结构和局灶性炎症聚集;
空间共定位分析:ACOX2/CTSB/SERPINF1表达与增生腺体区域的OS评分空间共定位。
实验验证
细胞培养与OS模型建立
ROS检测(流式细胞术)
ACOX2表达检测(RT-qPCR/Western blot)*
EdU增殖实验
Annexin V凋亡检测(流式细胞术)
FN1蛋白检测(Western blot)
免疫组化(IHC)